Bradford法又稱考馬斯亮藍(lán)法，是 Bradford 于 1976 年建立起來(lái)的一種蛋白質(zhì)濃度的測(cè)定方法。bradford法定量蛋白質(zhì)的原理是馬斯亮藍(lán)（CBB）測(cè)定蛋白質(zhì)含量屬于染料結(jié)合法的一種。考馬斯亮藍(lán)在游離狀態(tài)下呈紅色，大光吸收在488nm；以下是bradford法定量蛋白質(zhì)的原理及含量測(cè)定流程
bradford法定量蛋白質(zhì)的原理
考馬斯亮藍(lán)（CBB）測(cè)定蛋白質(zhì)含量屬于染料結(jié)合法的一種。考馬斯亮藍(lán)在游離狀態(tài)下呈紅色，大光吸收在488nm；當(dāng)它與蛋白質(zhì)結(jié)合后變?yōu)榍嗌鞍踪|(zhì)—色素結(jié)合物在595nm波長(zhǎng)下有大光吸收。其光吸收值與蛋白質(zhì)含量成正比，因此可用于蛋白質(zhì)的定量測(cè)定。蛋白質(zhì)與考馬斯亮藍(lán)結(jié)合在2min左右的時(shí)間內(nèi)達(dá)到平衡，完成反應(yīng)十分迅速；其結(jié)合物在室溫下1h內(nèi)保持穩(wěn)定。該法試劑配制簡(jiǎn)單，操作簡(jiǎn)便快捷，反應(yīng)非常靈敏，靈敏度比Lowry法還高4倍，可測(cè)定微克級(jí)蛋白質(zhì)含量，測(cè)定蛋白質(zhì)濃度范圍為0～1 000μg/ml，是一種常用的微量蛋白質(zhì)快速測(cè)定方法。
bradford法定量蛋白質(zhì)的含量流程：
該方法用于大多數(shù)蛋白質(zhì)的定量是比較的，但不適用于小分子堿性多肽的定量。如核糖酸酶或溶菌酶。去污劑的濃度超過(guò)0．2%影響測(cè)定結(jié)果。如TritonX-100、SDS、NP-40等。
1．Bradford濃染液的配制：將100mg考馬斯亮藍(lán)G-250溶于50ml 95%乙醇，加入100ml85%的磷酸，然后，用蒸餾水補(bǔ)充1000ml，此染液放4℃少6個(gè)月保持穩(wěn)定。
2．標(biāo)準(zhǔn)曲線蛋白質(zhì)樣本的準(zhǔn)備：盡量使用與待測(cè)樣本性質(zhì)相近的蛋白質(zhì)作為標(biāo)準(zhǔn)品，例如測(cè)定抗體，可用純化的抗體作為標(biāo)準(zhǔn)。如果待測(cè)樣本是未知的，也可用抗體作為標(biāo)準(zhǔn)蛋白。通常在20ug—150ug/100ul之間繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
3．將待測(cè)樣本溶于緩沖溶液中，該緩沖溶液應(yīng)與制作標(biāo)準(zhǔn)曲線的緩沖溶液相同(好用PBS)。
4．按1：5用蒸餾水稀釋濃染料結(jié)合溶液，如出現(xiàn)沉淀，過(guò)濾除去。
5．每個(gè)樣本加5ml稀釋的染料結(jié)合溶液，作用5～30min。染液與蛋白質(zhì)結(jié)合后，將由紅色變?yōu)樗{(lán)色，在595nm波長(zhǎng)下測(cè)定其吸光度。注意，顯色反應(yīng)不得超過(guò)30min．
6．根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算待測(cè)樣本的濃度。
注意：
考馬斯亮藍(lán)和皮膚中蛋白質(zhì)通過(guò)范德華力結(jié)合，反應(yīng)快速，并且穩(wěn)定，無(wú)法用普通試劑洗掉。待一兩周左右，皮屑細(xì)胞自然衰老脫落即可無(wú)礙。
bradford法定量蛋白質(zhì)的原理是根據(jù)蛋白質(zhì)可與考馬斯亮藍(lán)G-250 定量結(jié)合。當(dāng)考馬斯亮藍(lán) G-250 與蛋白質(zhì)結(jié)合后，其對(duì)可見光的大吸收峰從 465nm 變?yōu)?595nm。一般情況，當(dāng)溶液中的蛋白質(zhì)濃度增加時(shí)，顯色液在 595nm 處的吸光度基本能保持線性增加，因此可以用bradford法來(lái)測(cè)定溶液